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解锁mRNA疫苗研发与抗体评价自动化

点击次数:44 更新时间:2026-06-11
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稳定即效率——实验室自动化液体处理贯穿创新药开发关键环节,实现流程标准化,减少人为变量,保障数据质量,让每一次实验更加可靠。


自20世纪60年代发现mRNA以来,人们进行了许多尝试,试图利用mRNA作为向人体输送治疗药物和蛋白质的手段,近些年来,随着技术的快速发展,mRNA的快速降解问题的解决和对有效输送方法的开发进展也逐渐加快,与此同时,贝克曼库尔特生命科学也推出了mRNA疫苗开发中使用的先进工具及解决方案(戳此查看贝克曼库尔特生命科学解决方案),为加速发现和生产有效疫苗提供强大的支撑作用。


mRNA疫苗开发过程与贝克曼库尔特生命科学技术支撑工具


在mRNA疫苗研发过程中,使用高通量自动化克隆管线,包括Echo 525声波移液工作站QPix 420克隆挑选系统来组装Golden Gate构建体,可用于高效冠状病毒刺突变体克隆的自动化。而中和试验(neutralization assay)通常属于临床前研究阶段(preclinical stage)的重要功能性评价步骤,用于评估细胞或动物实验中疫苗诱导的抗体是否能阻断病毒感染、抗体的中和能力强弱(滴度)、不同设计或剂量方案的免疫效果对比,通常有假病毒中和试验、活病毒中和试验2种,是判断疫苗是否有效即产生抗体质量的关键功能性指标之一。


假病毒中和试验具有安全性、规模化和自动化的特点,因此在mRNA疫苗评价中最为常用。而假病毒中和试验的自动化,围绕自动化液体处理+自动化培养+自动化检测+数据四个模块,将“功能性免疫检测”从低通量手工实验,升级为高通量、标准化、可工业化的平台能力。贝克曼库尔特生命科学具有软硬件成熟解决方案,在假病毒中和试验自动化中积累了丰富的经验和数据。下面简单介绍几个基于荧光素酶化学发光法高内涵显微成像法假病毒中和试验的自动化案例:


案例1

荧光素酶化学发光法假病毒中和试验:

SARS‑CoV‑2慢病毒假型中和试验在由Biomek液体处理工作站、常温耗材存储系统、37℃恒温培养箱以及MD Paradigm多功能酶标仪组成的整合自动化平台上进行。自动化检测流程使用SAMI EX软件进行操作:



第1天,将样品以1:20起始稀释,并在D10培养基(含10% FBS、DMEM及0.3 µl/ml嘌呤霉素)中连续四倍稀释七次,所有操作均在无菌的聚丙烯384孔深孔板中完成。


随后,将稀释后的样品从批量稀释板移至单个384孔黑色培养板,每孔加样30 µl。将SARS‑CoV‑2 S假型病毒用D10稀释液稀释后,以每孔30 µL的体积加入到含有梯度稀释样品的细胞培养板中,随后在37 ℃、5% CO2条件下孵育45分钟。


随后,向上述病毒/样品细胞培养板中加入293T人源ACE2报告细胞,每孔接种10,000个细胞,总体积为20 µL,再于37 ℃、5% CO2条件下孵育72小时。第4天(即自第1天起72小时后),从各孔中取出50 µL培养基,并加入30 µL荧光素酶底物,室温静置2分钟,使样品与荧光素酶充分混合。


使用Paradigm多功能酶标仪测定发光信号(相对发光单位,RLU)。通过将待测样品的RLU值与病毒对照孔及细胞对照孔的RLU值进行归一化处理,计算得出该样品的中和百分率,公式如下:中和百分率 = [(待测孔RLU − 细胞对照孔RLU均值)−(病毒对照孔RLU均值 − 细胞对照孔RLU均值)] /(病毒对照孔RLU均值 − 细胞对照孔RLU均值)× 100。中和曲线拟合采用Labkey基于Web的服务器上的NAB分析模块,采用五参数非线性回归方法完成。中和抗体滴度以使RLU降低50%所需的血清稀释倍数的倒数表示,并以抑制剂量形式报告。


案例2

高内涵显微成像法假病毒中和试验:

靶细胞于中和实验前一天接种于384孔组织培养板上。病毒接种液的滴度经调整,使单层细胞的感染率不超过10%,以确保检测方法具有线性工作范围。将血清稀释液通过Echo 650声波移液工作站加入靶细胞中,最终在含10%胎牛血清的DMEM培养基中达到指定的稀释倍数,每种血清稀释度均设三个重复。加入病毒后48小时,通过在使用Hoechst 33342进行细胞核复染后,计算表达GFP的细胞百分比,并借助MD Image Xpress® Micro共聚焦高内涵显微成像系统进行测定,来评估转染效率。中和作用则通过计算假病毒的残余转染活性来衡量,以未处理样品作为100%。采用GraphPad Prism软件,基于最小二乘法的可变斜率模型,并按照标准化的剂量-效应分析方案,拟合得到了S型曲线及IC50值。


对一组既往未产生过免疫应答的BTN162b2 mRNA疫苗接种者(N组,n=50)以及既往曾感染过SARS‑CoV‑2的个体(P.I.组,n=51)开展了血清学研究。检测了针对SARS‑CoV‑2刺突蛋白(S)的IgG、IgM和IgA抗体,以及针对核衣壳蛋白(N)的IgG抗体,并评估了在接种前、接种第一剂及第二剂后所采集血清的中和活性。


案例3

基于微球的多重抗体结合测定法:

使用经加热灭活的分别以50 μg的SpFN或PBS进行两次免疫接种的恒河猴血清,或纯化的单克隆抗体,通过Biomek NXP®自动化液体处理仪将样品稀释后移液至384孔检测板中。将11种覆盖SARS‑CoV‑2或SARS‑CoV‑1的Spike S1和S2结构域抗原与1种对照蛋白(HIV‑1抗原)共价偶联至经编码的磁性微球上,随后,将上述复合物以每孔50 μl的终体积加入96孔板中。在剧烈振荡条件下孵育2小时后,使用磁性384孔自动化洗板仪洗涤微球,以去除未结合的样品。接着,用0.5 μg/ml的小鼠抗人IgG‑PE(Southern Biotech)重悬微球,在3,000 rpm的微孔板涡旋仪上振荡1分钟,超声处理1分钟,然后在剧烈振荡下继续孵育1小时。最后一步洗涤去除非特异性结合的检测试剂,并用40 μl的鞘液重悬微球,并上机测定。


假病毒中和试验:采用表达hACE2的HEK293靶细胞(Integral Molecular)并结合自动化液体处理工作站Biomek NXp,测定病毒的感染性和中和效价。样品在生长培养基中按1:40进行稀释,并进行倍比稀释,随后每孔加入25 μL至白色96孔板中。纯化单克隆抗体起始浓度为1 mg/mL。每孔加入等体积的稀释后SARS‑CoV‑2 pSV,将板置于37 °C下孵育1 h。随后向各孔加入靶细胞(40,000个/孔),再继续孵育48 h。使用多功能酶标仪测定相对发光单位(RLU)。中和效价—反应曲线采用LabKey服务器进行非线性回归拟合,最终报告的滴度为达到50%中和(ID50,即50%抑制剂量或IC50,即50%抑制浓度)以及80%中和(ID80,即80%抑制剂量或IC80,即80%抑制浓度)时所需血清稀释倍数的倒数。


作为mRNA疫苗的另一个应用方向,基因递送治疗性单克隆抗体(mAb)以及其他生物制剂彻底改变了医学;然而,与相对不被接受者免疫系统注意到的治疗性小分子不同,生物制剂通常足够大,具有免疫原性。这可能导致接受者产生抗药物抗体(ADA)。抗mAb ADA可引起mAb中和和加速mAb的清除,导致功效显著降低。ADA还与严重的急性反应有关,如过敏反应和长期免疫复合物相关疾病。使用去除了T细胞表位的全人mAb和人源化mAb有助于降低治疗性mAb的免疫原性,但目前还不可能预先排除ADA诱发的风险。因此,mAb的临床前和临床研究必须包括ADA诱导的筛选,并且ADA产生及其临床后果的评估对于监管机构批准生物制品是必要的。与作为蛋白质递送的常规治疗性mAb不同,工程化人源IgG1 mAb通过包封在脂质纳米颗粒(LNP)中的mRNA静脉内递送,并且在接受者体内转录成蛋白。基因递送mAb的优点是开发更快,并且放大生产更具成本效益


在此,小贝介绍一种开发用于检测大鼠抗体筛选和确证的桥接ELISA自动化方法,并评价试验的特异性、灵敏度、选择性、无前区效应、线性、试验内和试验间精密度以及鲁棒性等。这一方法学和和方法提供了一个可适用于基因递送mAbs及其他生物制剂的临床前测试中ADA的自动检测和确认的模板,也为非单一应用实验室自动化平台提供新应用方向。


自动化平台:

具有span-8和1200 μL 96孔头的Biomek i7液体处理工作站、整合405LS洗板机(BioTek)、SpectraMax 384 plus酶标仪(MD)和储板站用于执行所有桥接ELISA步骤。使用Biomek软件设计和优化移液参数用于兼顾重复性和速度。使用SAMI EX排程软件设计和执行测定工作流程。使用SoftMax收集酶标仪数据,存储于数据采集与报告工具(DART)中。


SAMI EX控制自动化动态排程操作,以根据批处理大小和用户设定的可接受时序范围,最小化总运行时间。这意味着操作的时间和顺序会根据批次大小而变化。因此,单批次中不同板的结果可能存在差异,并且根据单板与4板排程的不同而有所差异。为评估筛选试验的板间精度,在单次筛选测试中,对高、中、低和阴性对照组的四份,每份在四块板上四个复孔。所有孔板中,A450与anti-ID水平成正比,A450的板间%CV在所有对照中均低于10%(高:1.8%,中:3.8%,低:9.5%,阴:7.9%)。这些%CV与板内精度结果接近,且明显低于检测间的%CV。在用Bonferroni的多重比较检验进行双因子方差分析(p=0.17)评估时,单次四盘测试中阳性对照组与四次独立单盘测试的归一化结果无显著差异。因此,筛选试验无论批次大小如何都能给出可重复的结果,证明SAMI EX排程的板间运行精度和鲁棒性


基于稳定的测试验证结果,大鼠ADA Screening ELISA(筛选ELISA)和Confirmatory ELISA(确认ELISA)得以自动化开发。然后使用自动化方案来评价LNP包封的编码DH1042的mRNA给药的大鼠血清中的抗DH1042抗体。大鼠接受两个剂量的0.1、0.4或0.6 mg/kg/剂量的LNP-mRNA,间隔8天。第二次给药后21天,不同剂量水平的50-100%的大鼠产生了确认的抗DH1042抗药抗体(ADA)。对照组中没有动物产生抗DH1042 ADA。这一基于通用型Biomek液体处理工作站、并由SAMI EX动态排程软件驱动的抗治疗性单克隆抗体抗药抗体检测自动化分析方法的开发、验证与应用,可便捷地应用于其他物种及治疗性药物的抗药抗体检测方法的开发。


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SAMI EX排程4板运行测试精度和鲁棒性


Screening ELISA试验流程包括:

 1 

抗体包被

 2 

洗板封闭

 3 

加样(按照1:10稀释至最小所需稀释度MRD)四个复孔

 4 

加入生物素标记抗体

 5 

加HRP标记链霉亲和素

 6 

TMB显色

 7 

450 nm读数


图 ADA-RAT-screening assay 1~6步


图 ADA-RAT-screening assay 6~7步


Confirmatory ELISA试验流程包括:

在筛选ELISA试验基础上加入游离抗体竞争结合、比较有无竞争时信号,用于排除假阳性。


图 ADA-RAT-confirmatory assay 1~4步


图 ADA-RAT-confirmatory assay 6~7步


通过以上介绍我们不难发现,自动化已经成为当前mRNA疫苗研发与抗体评价的一个关键发展方向,尤其在高通量筛选、标准化和工业化检测中非常重要。贝克曼库尔特生命科学可为您提供专业的mRNA疫苗自动化解决方案,欢迎感兴趣的小伙伴拨打热线与我们联系。


参考文献(上下滑动阅览)


1、Antibody escape and cryptic cross-domain stabilization in the SARS-CoV-2 Omicron spike protein

2、Mucosal adenovirus vaccine boosting elicits IgA and durably prevents XBB.1.16 infection in nonhuman primates

3、Serology study after BTN162b2 vaccination in participants previously infected with SARS-CoV-2 in two different waves versus naïve

4、Diverse array of neutralizing antibodies elicited upon Spike Ferritin Nanoparticle vaccination in rhesus macaques

5、ALFQ adjuvanted HIV-1 envelope protein vaccination elicits durable functional antibody and cellular responses in nonhuman primates

6、A scalable serology solution for profiling humoral immune responses to SARS-CoV-2 infection and vaccination

7、The anti-SARS-CoV-2 monoclonal antibody, bamlanivimab, minimally impacts the endogenous immune response to COVID-19 vaccination

8、Development and validation of an automated assay for anti-drugantibodies in rat serum




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